手机,WIFI等产生的电磁波(EMF)对人体健康的危害

手机,WIFI等产生的电磁波(EMF)产生自由基(peroxynitrite)严重影响细胞线粒体功能,导致DNA损伤,与心律失常,焦虑,抑郁,自闭症,老年痴呆,不育,以及癌症等有关。人们怀疑/想信EMF有损于健康已有近50年历史,但直到近年的研究,才逐渐明白EMF损害健康的机理。EMF影响健康的一个重要机制是激活细胞膜上的钙离子通道,导致钙大量内流,严重影响细胞功能尤其是线粒体功能。可以通过晚上关闭WIFI, 手机,使用免提或有线耳机,大量镁离子,减少热卡摄入等降低EMF的有害效应。

又是钙及线粒体!

有关EMF于健康之研究众多,然极少有人进行综合研究评估。Martin Pall博士花了大量时间(过去18年)研究此问题。他的最关键的发现是:钙离子拮抗剂可以抵挡或大量的减弱EMF的伤害作用!(这与我长期以来一直推广的“补钙有害,应该补镁及钙离子拮抗剂。镁及钙离子拮抗剂不仅可以降血压,而且有多重其他抗衰老功能”一致)。

EMF损害健康机理:文献中有26篇文章显示,EMF激活细胞外膜上的钙离子压力门(Voltage-Gated Calcium Channels, VGCC)。即使是最低的EMF,其对VGCC的压力仍然远远超过(>7百万倍)正常情况下细胞环境的压力。当EMF打开VGCC后,导致大量钙离子内流,过度激活钙离子信号通道,同时产生超量的一氧化氮(NO), 过量的NO与过氧化物(superoxide)反应产生过亚硝酸盐(peroxynitrite)及过氧化氢。最后产生大量自由基。

EMF比X光更危险!

研究显示EMF对人体的伤害比X光大几个数量级!如:一德国教授(Franz Adlkofer)团队比较了相当于1600个胸部X光检查的X光量及24小时使用手机。他们发现,二者对DNA的损害相当。而Pall博士认为这大大低估了手机的危害,因为手机用的是连续波EMF(continuous wave EMF)而非脉冲波。充分证据显示脉冲波EMF危险更大。而所有无线通信全用脉冲波。

如何减少EMF的有害影响?

尽量减少使用无线装置(无线电话,WIFI,篮牙耳机,婴儿监视器等),晚上关闭WIFI,甚至可在家中安装EMF屏蔽。另外,加大镁离子的摄入(可以摄入高达1000-2000毫克/日),停止䃼钙剂,甚至使用钙离子拮抗剂。

激活Nrf2,抵削EMF毒性。

Nrf2上调超氧化歧酶(superoxide dismutase), 过氧化氢酶(catalase)及其他细胞内抗氧化剂。也能降低炎症,改善线粒体功能,刺激线粒体新生,帮助身体排毒,激活>500个有细胞保护作用的基因。一个简单的激活Nrf2的办法是多吃富含箩卜硫素(sulforaphane)的十字科植物(西兰花的芽最佳,西兰花次之,以及卷心菜,萝卜等)(我已宣传很久要多吃箩卜硫素),长链N-3脂肪(DHA, EPA), 类胡罗卜素(carotenoids, esp. lycopene)等。另外,锻炼,定期禁食(或限制热卡)都能上调Nrf2。

Martin Pall (2013) Electromagnetic fields act via activation of voltage-gated calcium channels to produce beneficial or adverse effects. J Cell Mol Med v.17(8); 2013 Aug PMID: 23802593

桥本氏甲状腺炎病人存在的问题及综合治疗

希望桥本氏甲状腺炎和其他自身免疫性疾病的患者,通过本文以认识到这些自身免疫性疾病的性质,并采取措施治愈或至少控制该疾病。我希望您知道,自身免疫性疾病可以成功治疗,可以减缓甚至终止自身免疫过程达到治愈。但是,像所有其他慢性病一样,它需要采用综合方法来实现这一目标。

自身抗体是桥本甲状腺炎(和其他自体免疫疾病)的自身免疫过程正在进行的,活跃程度的指标。如果不加以控制,这种活跃的,渐进式的免疫过程将逐渐破坏甲状腺和其他器官和组织,甚至可能导致癌症

最近,我咨询了一些自身抗体很高的活动性桥本氏甲状腺炎患者。我发现了一个普遍的问题:其中许多患者对桥本甲状腺炎并不完全了解,也不了解桥本甲状腺炎如果得不到良好的控制可能会带来的严重后果。他们最关心的是甲状腺激素水平,而对升高的自身抗体并不十分关心。自身抗体是桥本甲状腺炎(和其他自体免疫疾病)的自身免疫过程正在进行的,活跃程度的指标。如果不加以控制,这种活跃的,渐进式的免疫过程将逐渐破坏甲状腺和其他器官和组织,甚至可能导致癌症。桥本甲状腺炎在初期一般是没有甲状腺功能低下的。只有当甲状腺破坏到一定程度,没有足够的正常甲状腺组织时,才会出现甲状腺功能低下。此时,您的甲状腺已大部分被破坏了,需要(可能―辈子)补充甲状腺激素了。

我不能怪这些病人,因为他们的主治医生通常也不了解这些问题

  • 桥本甲状腺炎治疗的当前问题。桥本甲状腺炎目前的标准治疗便是等待,等到甲状腺功能减退时,开始使用甲状腺激素替代疗法。这又是一个典型的对症治疗。对于潜在的免疫疾病过程没有任何干预。我们都知道,如果桥本甲状腺炎的过程得不到控制,它将最终不可避免地破坏甲状腺,并可能导致包括甲状腺癌在内的许多并发症(见下)。

例如,美国著名的梅约诊所(Mayo Clinic)网站上对桥本甲状腺炎治疗的建议:

桥本氏病的治疗可能包括观察和使用药物。如果甲状腺功能正常,医生可能会建议您静观其变。(当甲状腺功能低下时)您需要甲状腺激素替代治疗,而且是一辈子使用。”

在Medscape.com(一个很受欢迎的美国医生再教育热门网站),对于桥本甲状腺炎的治疗与梅约诊所大约一样:静观其变,必要时使用甲状腺激素替代疗法。

  • 桥本甲状腺炎病人常有肠道通透性增加(包括肠微漏和肠道菌群失调)。事实上肠道通透性增加是自身免疫性疾病(以及大部分慢性病)的常见病因之―。我们对肠道通透性增加(包括肠微漏和肠道菌群失调)与健康,慢病的关系有过很多的介绍。肠道通透性增加与桥本甲状腺炎关系密切(1-4)。
  • 桥本甲状腺炎病人常有重金属及化学物污染

我们对重金属及化学物污染与健康,慢病的关系有过很多的介绍。

一项大型调查(美国国家健康与营养调查,NHANES)发现5500多名受试者(1109名青少年和4409名成年人)中,汞,镉等重金属超标者甲状腺激素降低(提示甲状腺破坏)(5)。

Rana等研究发现,铅,汞,镉,铜,砷和镍等重金属会损害内分泌系统,包括肾上腺,甲状腺,睾丸,卵巢和胰腺,导致2型 糖尿病和桥本甲状腺炎等(6)。

我们一项最近对32位受试者进行的重金属检测中,5位有桥本甲状腺炎,重金属检测都超标。

综上所述,经口(以及皮肤,呼吸道等)摄入的各种有害污染物,包括抗生素,重金属,化学物等破坏我们的胃肠道,导致肠道通透性增加。而增加的肠道通透性导致各种未彻底消化的大分子物质及毒素进入体内,产生包括免疫反应在内的有害反应。重金属,化学物等也能经皮肤,呼吸道等进入体内。这些有害污染物进入体内后产生包括免疫反应在内的有害反应。这些有害反应(包括免疫反应)本质上是一个引起氧化压力升高的炎症反应。这些炎症反应作用在甲状腺,肾上腺,睾丸,胰腺和卵巢上导致各种疾病。

  • 桥本甲状腺炎病人氧化压力升高

在一项针对80人的研究中,对40例甲状腺功能正常的桥本甲状腺炎患者和40例有甲状功能减退症的桥本甲状腺炎患者进行了9个月的随访。随访中测量总氧化剂和氧化压力指数。发现明显的甲状腺功能减退症患者的氧化压力更高,表明潜在的炎症过程在疾病的进展中起重要作用(7)。

另一项针对134名受试者的研究(71名新诊断为桥本氏甲状腺炎的患者和63名年龄相仿的正常人群,均未接受甲状腺激素治疗)发现,甲状腺功能正常的桥本氏甲状腺炎患者中氧化剂增加而抗氧化剂减少(8)。值得注意的是,桥本氏甲状腺炎患者中晚期糖化终末产物(AGEs)也升高。血清AGEs水平升高反映出氧化压力增加。

在一项针对300名受试者(205名桥本甲状腺炎患者和95名正常对照)的研究中,氧化压力在桥本甲状腺炎患者中显着升高,并且与疾病进展相关(9)。

Chakrabarti等人使用血清丙二醛(MDA)作为氧化压力的标志物,在对60位桥本甲状腺炎患者的临床研究中报道,有甲状腺功能减退的病人氧化压力升高(10)。

  • 仅仅甲状腺激素替代疗法是重要的对症治疗,但是不够的。

许多接受适当甲状腺激素替代疗法的桥本甲状腺炎病人,临床症状并不能得到完全控制,并且伴有生活质量下降(11)。

这是因为桥本甲状腺炎的临床症状可以来源于:1. 甲状腺功能低下引起的甲低症状;2. 甲状腺(自身免疫)炎症引起的症状;3. 引起桥本甲状腺炎的病因(如肠道通透性增加,及重金属及化学物污染)导致的甲状腺外其他器官的(自身免疫)炎症,损伤引起的症状。

  • 低碳/生酮饮食是治疗桥本甲状腺炎的第一步。

在一项针对17名患有桥本甲状腺炎的女性病人的临床研究中,经过仅仅10周的自身免疫饮食方案(AIP)(基本上是一种改良的Paleo饮食,类似于低碳/生酮饮食),临床症状,生活质量 以及hsCRP(氧化压力标志物)便得到了显着改善,尽管甲状腺激素和自身抗体无明显变化。该研究清楚地表明了抗氧化剂在控制HT中的重要作用,其中抗氧化剂来自饮食或补充剂,或两者兼而有之(11)。

低碳/生酮饮食不仅仅是糖尿病治疗上的首选,也是桥本甲状腺炎等自身免疫病治疗的首选。在桥本甲状腺炎等自身免疫病治疗中,低碳/生酮饮食的主要目的是减少食物中的引起并促进肠道通透性增加的各种农药,化学物及重金属等污染物。而各种农作物(尤其是高碳水的粮食作物)中这些污染尤其明显。

在低碳/生酮饮食中,我们特别提倡增加富含抗氧化剂的有机蔬莱及酱果类少含糖的有机水果。

  • 抗氧化补充剂及全细胞营养素。富含抗氧化剂的有机蔬莱及酱果类少含糖的有机水果的低碳/生酮饮食在桥本甲状腺炎等自身免疫病的治疗中可能还不够,我们一般会加用大剂量抗氧化补充剂及全细胞营养素,至少在疾病的活动期。抗氧化补充剂及全细胞营养素不仅用于中和各种有害毒素,降低氧化氧化,而且帮助肠胃粘膜修复。待疾病得到控制后,可以适当减少。使用低碳/生酮饮食以及大剂量抗氧化补充剂,我们成功地治疗了大量自身免疫病病人
  • 其他综合治疗措施:其他综合治疗措施,包括荷尔蒙平衡。

 

  • 桥本的甲状腺炎比您想象的要普遍得多,许多人并未意识到他们有桥本甲状腺炎

在过去的几十年中,自身免疫性疾病正在增加(12,13)。

在美国,桥本甲状腺炎是6岁后甲状腺功能减退的最常见原因,在一系列5000名11-18岁的儿童中,桥本甲状腺炎的发病率估计为1.3%。在成年人中,女性的发病率估计为每年每千人中有3.5例,男性每年的发病率为每千人中有0.8例。在涉及25,862名成年人的科罗拉多州甲状腺疾病患病率研究中,有症状和无症状成年人的TSH升高患病率为9.5%,其中更大比例的是女性。甲状腺功能减退症和甲状腺疾病的患病率通常随年龄增长而增加(14)。

桥本的甲状腺炎估计约为0.7%,女性的发病率是男性的3-4倍,在30至50岁的人群中更为常见。由于其中一些患者未被诊断出,实际疾病患病率可能更高(15)。

  • 桥本氏甲状腺炎可能是自身免疫过程的一部分,常常伴有其他自身免疫性疾病,尽管甲状腺特异性损害更大。桥本甲状腺炎最常见的包括其他自身免疫性疾病在内的并发症,例如:
  1. 艾迪生氏病 (Addison’s disease)
  2. 格雷夫斯病 (Grave’s disease,自身免疫性弥漫性甲状腺肿)
  3. 卵巢早衰
  4. 1型和2型糖尿病。2019年一项中国进行的临床研究中,作者对24个内分泌中心进行了调查,共1677名2型糖尿病(T2DM)患者。在这1677名T2DM患者中,几乎有四分之一患有甲状腺功能障碍。在这些患者中,大多数患者均未充分治疗T2DM和甲状腺功能障碍(21)
  5. 系统性红斑狼疮(16)
  6. 恶性贫血
  7. 类风湿关节炎(17)
  8. 血小板减少性紫癜
  9. 白癜风(一种由于对皮肤色素细胞的攻击而在皮肤上产生白色斑块的疾病)(18)
  10. 牛皮癣(19)
  11. 非特异性炎性关节炎。桥本氏甲状腺炎患者中高达1/4的病1人有非特异性炎性关节炎(20)。
  12. 甲状腺恶性肿瘤。一项对76281位案例的的荟萃分析发现桥本甲状腺炎患甲状腺乳头状癌风险明显升高(22)。桥本甲状腺炎患者得淋巴瘤的风险比普通人群高出至少60倍(23)。
  13. 甲状腺脑病,桥本氏甲状腺炎患者的临床症状也可能包括神经精神症状出现精神分裂症状(24)。

更多,请点击

文献:

  1. Mu,2017 [28588585]
  2. Smyth,2017,https://doi.org/10.1093/biohorizo​​ns/hzx015
  3. Mori,2012 [23200063]
  4. Köhling,2017 [28689782]
  5. Chen,2013 [23164649]
  6. Rana,2014 [24898714]
  7. Ates,2018 [29185364]
  8. Ruggeri,201 [26854840]
  9. Giannakou,2017 [28226412]
  10. Chakrabarti ,2016 [27730079]
  11. Abbott,2019 [31275780]
  12. (https://www.immunology.org/news/report-reveals-the-risingrates-autoimmune-conditions
  13. Cooper, 2009 [19819109]
  14. https://emedicine.medscape.com/article/120937-overview#a5
  15. 王庭槐, 《生理学》,人民卫生出版社,2018。
  16. Biro,2006 [16247581]
  17. Roldan, 2012 [23209899]
  18. Kakourou, 2005 [16021113]
  19. Alidrisi,2019 [31157131]
  20. Valderrama-Hinds,2019 [31621191]
  21. Zhu, 2019 [31048873]
  22. Lai, 2017 [28977955]
  23. https://www.uptodate.com/contents/thyroid-lymphoma
  24. Churilov, 2019[31801687]

 

生酮饮食会导致您失去更多的肌肉吗?生酮和肌肉损失的一些近期研究

比较在运动员/举重运动员中非生酮饮食与生酮饮食对肌肉损失的影响的现有研究表明,生酮饮食能降低体重,体脂,内脏脂肪,也会导致瘦肉减少(lean body mass),但无证据显示体能(肌肉力量)的下降。瘦肉减少(lean body mass)并不一定等于肌肉减少。

另外,肌糖原(约500克)的丢失也是一个原因。

但是:

  1. 由于“酮冲洗”(在摄入低碳水化合物饮食时会出现大量水分流失)现象,这并不意味着一定是肌肉损失。
  2. 由于生酮饮食往往会导致热量摄入减少,因此瘦体重/肌肉的较大减少可能是由于产生的热量不足,而不是生酮饮食本身造成的。

举重运动员生酮饮食期间一般而言都可以维持力量表现,而且生酮饮食对力量的影响因人而异。

总之,目前已有研究显示生酮饮食导致更大瘦肉质量减少,但并不影响肌肉的力量(生酮饮食与非生酮饮食能产生相似的肌肉强度增加)。

近期相关研究:

12位运动员分为生酮饮食及常规饮食二组。运动训练12周后,通过DXA评估瘦体重和脂肪质量。生酮饮食组比常规饮食组损失的体内脂肪更多,但他们也失去了(腿部)瘦体重,而常规饮食组则没有。但生酮饮食组的体能监测并未下降(1)。

生酮饮食组的体内脂肪损失明显更大,热量摄入减少,这可以解释相对于非生酮饮食组,瘦体重的损失更大。

采用了类似的研究方案(在奥林匹克举重运动员中),但也采用了交叉设计。在这里,受试者在三个月的典型饮食(> 250克碳水化合物)和生酮饮食(每天<50克碳水化合物)之间交替。生酮组损失了更多的脂肪,以及下半身和总瘦体重。然而,二组的体能表现大致相似(2)。

同样,在生酮饮食治疗期间脂肪损失更多,力量并无下降。这可以(至少部分地)解释为什么生酮饮食导致更多的瘦体重减少。

24名30岁左右健康男性分为生酮饮食与非生酮饮食二组,进行了8周的阻力训练。二组规定的饮食总热量超过每日需求。生酮饮食组体脂及内脏脂肪均明显下降,但瘦体重以及运动表现没有均无明显下降(3)。

一项对奥林匹克举重运动员的高脂低碳(LCHF)研究,其中受试者碳水化合物降至1g / kg(接近生酮饮食)。发现受试者对此饮食接受度较高,运动表现没有下降,但体重有所下降(4)。

这表明个体之间对生酮饮食的反应可能有所不同,但是生酮饮食可能不利于增强肌肉对增强。

  1. Kephart, et al, 2018 [ 29910305]
  2. Greene, et al, 2018 [30335720]
  3. Vargas et al, 2018 [29986720]
  4. Chatterton, et al (2017)  Journal of Australian Strength and Conditioning.

你住的地方重金属污染超标吗?我们32位咨询客户/病人重金属检测及临床诊断浅析

在上一篇文章中,我们讨论了重金属污染对健康的潜在风险以及与疾病的关联。我们将在本文中深入探讨这个问题,它直接影响到大多数读者的健康。

福建师范大学地球科学学院的Eschetu Shifaw于2018年在 Journal of Pollution and Health《健康与污染杂志》上发表了一篇论文系统回顾并总结了文献中报道的中国土壤污染研究结果(1)。《健康与污染杂志》是一份由世界银行与欧共体出资主办的同行评审的杂志。

在认识到土壤污染是中国的一个严重问题之后,2005年至2013年间进行了全国性的大规模土壤调查,覆盖了中国70%以上的土地面积。调查发现16%的土壤样品和19%的农业土壤被重金属污染。大部分污染(约82%)归因于重金属和类金属污染,17%归因于有机污染物。

化学肥料和杀虫剂导致镉(Cd)(7.24%),镍(Ni)(3.04%),铜(Cu)(2%)和汞(Hg)(2%)的高污染率。城市土壤中重金属的污染通常比农业土壤严重。

下列3表总结了中国各省直辖市重金属污染指数及部分主要城市城区及农业土壤重金属污染情况。

表1. 中国各省直辖市重金属污染指数。数据采自(1)。

表2. 部分城市城区土壤重金属污染指数。数据采自(1)。

表3. 部分城市农业土壤重金属污染指数。数据采自(1)。

  • 中国各省及主要城市重金属指标均超出背景值。
    • 沈阳的各项重金属指标高出 9 倍到 109 倍(表2)。
    • 镉与汞比其他重金属污染更为严重。
  • 高出5倍以上的省市:

    • 北京(汞,>11倍)
    • 广东(汞,5>倍)
    • 广西(镉,>13倍;汞,~6倍)
    • 贵州 (镉,9.5倍;汞,>6倍)
    • 广州(镉,6.3倍)
    • 上海(镉,6.6倍)
    • 杭州(镉,16.5倍)
    • 长沙(镉,87倍)
    • 香港(镉,7.8倍)
    • 洛阳(镉,22倍)
    • 长春(镉,37倍)
    • 沈阳(铅,20倍;镉,109倍;锌,8.8倍;銅,10倍)
    • 徐州(镉,6.8倍)
    • 福州(镉,9.4倍)
  • 高出5倍以上的农用土地:

    • 广州(汞,19倍)
    • 杨州(汞,5.3倍)
    • 成都(汞,8倍)
    • 昆山(汞,5.2倍)
    • 徐州(镉,33倍)

图4. 我们最近32位咨询客户/病人及重金属检测临床诊断表。重金属分为高毒性,具毒性及一般毒性三大类。我们给每个超标的高毒性金属3分;每个超标的具毒性金属2分;每个超标的一般毒性金属1分。累计积分称为“重金属积分”。重金属积分越高代表超标的重金属越多,毒性越大。

32位咨询客户/病人中大部分来自上海及江渐附近。其他有来自北京,深圳,福建等地区。

从图4结果可见:

  1. 三分之二(21位) 客户/病人至少有一项高毒性金属超标;
  2. 三分之一 (10位)客户/病人至少有二项高毒性金属超标;
  3. 有十二位(12/32)重金属积分达到10,最高达23;这十二位都有不同的慢病,包括癌症,糖尿病,自闭症,智力/身体发育迟缓,自身免疫病,三高症等。
  4. 尤其值得重视:一位4岁男孩,自闭症,智力/身体发育迟缓,铅,鎘,砷,铝,锑,铋,铊,锡,银,铷等10项超标。重金属积分达22分。为我们32位人中重金属积分第二高。
  5. 另一位高中女孩,17岁,自身抗体阳性,钡,锡,铀,钨,铂,钍,钛等8项超标为我们32位人中重金属积分第五高。
  6. 无慢性病及总体较健康者,重金属积分较低。

文献:

  1. Shifaw E. 2018. Review of Heavy Metals Pollution in China in Agricultural and Urban Soils.  2018 Jun 6;8(18):180607. doi: 10.5696/2156-9614-8.18.180607. eCollection 2018 Jun. PMID: 30524856

揭开PET-CT检查辐射的真相

我坚决反对正常人用PET-CT体检。我也呼吁用CT作肿瘤病人治疗随防要少用。如果已经确诊为了,我建议用超声波,MRI等随访肿瘤大小。CT尽量少用。国内确有CT滥用现象。几年前我一功能医学群内一友吹嘘他们单位福利好,每年一次免费CT体检。我大惊。另:PET-C丅只应用于肿瘤病人是否有远处转移以及确定是否主要依靠葡萄糖供能。如果实在必须做CT, 我建议同时服用大量抗氧化剂,尤其是大剂量Vit C,以对抗大剂量幅射。

揭开PET-CT检查辐射的真相

文献: 糖尿病等慢性疾病的综合管理-环境污染与2型糖尿病关系篇

References for Integrative Medical Management of Diabetes and Other Chronic Diseases

“糖尿病等慢性疾病的综合管理-必需金属及有毒金属与2型糖尿病关系篇”文献

文献 (References)

  1. Rate of diabetes in China “explosive” [Internet]. [cited 2019 Dec 7]. Available from: https://www.who.int/china/news/detail/06-04-2016-rate-of-diabetes-in-china-explosive-
  2. CDC Press Releases [Internet]. CDC. 2016 [cited 2019 Dec 7]. Available from: https://www.cdc.gov/media/releases/2017/p0718-diabetes-report.html
  3. Kazi TG, Afridi HI, Kazi N, Jamali MK, Arain MB, Jalbani N, Kandhro GA. Copper, chromium, manganese, iron, nickel, and zinc levels in biological samples of diabetes mellitus patients. Biol Trace Elem Res. 2008 Apr;122(1):1–18.
  4. Simsek A, Aykut O. Evaluation of the microelement profile of Turkish hazelnut (Corylus avellana L.) varieties for human nutrition and health. Int J Food Sci Nutr. 2007 Dec;58(8):677–88.
  5. Soetan KO, Olaiya CO, Oyewole OE. The importance of mineral elements for humans, domestic animals and plants: A review. :23.
  6. Grivetti LE, Ogle BM. Value of traditional foods in meeting macro- and micronutrient needs: the wild plant connection. Nutr Res Rev. 2000 Jun;13(1):31–46.
  7. Khan AR, Awan FR. Metals in the pathogenesis of type 2 diabetes. J Diabetes Metab Disord. 2014 Jan 8;13:16.
  8. Fraga CG. Relevance, essentiality and toxicity of trace elements in human health. Mol Aspects Med. 2005 Oct;26(4–5):235–44.
  9. McCall KA, Huang C, Fierke CA. Function and mechanism of zinc metalloenzymes. J Nutr. 2000;130(5S Suppl):1437S-46S.
  10. Lu Y, Yeung N, Sieracki N, Marshall NM. Design of functional metalloproteins. Nature. 2009 Aug 13;460(7257):855–62.
  11. Lutsenko S, Barnes NL, Bartee MY, Dmitriev OY. Function and regulation of human copper-transporting ATPases. Physiol Rev. 2007 Jul;87(3):1011–46.
  12. Guidotti TL, McNamara J, Moses MS. The interpretation of trace element analysis in body fluids. Indian J Med Res. 2008 Oct;128(4):524–32.
  13. Stechmiller JK. Understanding the role of nutrition and wound healing. Nutr Clin Pract Off Publ Am Soc Parenter Enter Nutr. 2010 Feb;25(1):61–8.
  14. Wish JB. Assessing iron status: beyond serum ferritin and transferrin saturation. Clin J Am Soc Nephrol CJASN. 2006 Sep;1 Suppl 1:S4-8.
  15. Kundu D, Roy A, Mandal T, Bandyopadhyay U, Ghosh E, Ray D. Relation of iron stores to oxidative stress in type 2 diabetes. Niger J Clin Pract. 2013 Jan 1;16(1):100.
  16. McClain DA, Abraham D, Rogers J, Brady R, Gault P, Ajioka R, Kushner JP. High prevalence of abnormal glucose homeostasis secondary to decreased insulin secretion in individuals with hereditary haemochromatosis. Diabetologia. 2006 Jul;49(7):1661–9.
  17. Raj S, Rajan GV. Correlation between elevated serum ferritin and HbA1c in type 2 diabetes mellitus. Int J Res Med Sci. 2017 Jan 26;1(1):12–5.
  18. Rajpathak S, Ma J, Manson J, Willett WC, Hu FB. Iron intake and the risk of type 2 diabetes in women: a prospective cohort study. Diabetes Care. 2006 Jun;29(6):1370–6.
  19. Adams PC, Reboussin DM, Barton JC, McLaren CE, Eckfeldt JH, McLaren GD, Dawkins FW, Acton RT, Harris EL, Gordeuk VR, Leiendecker-Foster C, Speechley M, Snively BM, Holup JL, Thomson E, Sholinsky P, Hemochromatosis and Iron Overload Screening (HEIRS) Study Research Investigators. Hemochromatosis and iron-overload screening in a racially diverse population. N Engl J Med. 2005 Apr 28;352(17):1769–78.
  20. Acton RT, Barton JC, Passmore LV, Adams PC, Speechley MR, Dawkins FW, Sholinsky P, Reboussin DM, McLaren GD, Harris EL, Bent TC, Vogt TM, Castro O. Relationships of serum ferritin, transferrin saturation, and HFE mutations and self-reported diabetes in the Hemochromatosis and Iron Overload Screening (HEIRS) study. Diabetes Care. 2006 Sep;29(9):2084–9.
  21. Worwood M. Serum transferrin receptor assays and their application. Ann Clin Biochem. 2002 May;39(Pt 3):221–30.
  22. Jiang R, Manson JE, Meigs JB, Ma J, Rifai N, Hu FB. Body iron stores in relation to risk of type 2 diabetes in apparently healthy women. JAMA. 2004 Feb 11;291(6):711–7.
  23. Jehn M, Clark JM, Guallar E. Serum Ferritin and Risk of the Metabolic Syndrome in U.S. Adults. Diabetes Care. 2004 Oct 1;27(10):2422–8.
  24. Fernández-Real JM, Peñarroja G, Castro A, García-Bragado F, Hernández-Aguado I, Ricart W. Blood letting in high-ferritin type 2 diabetes: effects on insulin sensitivity and beta-cell function. Diabetes. 2002 Apr;51(4):1000–4.
  25. Papanikolaou G, Pantopoulos K. Iron metabolism and toxicity. Toxicol Appl Pharmacol. 2005 Jan 15;202(2):199–211.
  26. Lee D-H, Liu DY, Jacobs DR, Shin H-R, Song K, Lee I-K, Kim B, Hider RC. Common presence of non-transferrin-bound iron among patients with type 2 diabetes. Diabetes Care. 2006 May;29(5):1090–5.
  27. Sharifi F, Nasab NM, Zadeh HJ. Elevated serum ferritin concentrations in prediabetic subjects. Diab Vasc Dis Res. 2008 Mar;5(1):15–8.
  28. Kim C-H, Kim H-K, Bae SJ, Park J-Y, Lee K-U. Association of elevated serum ferritin concentration with insulin resistance and impaired glucose metabolism in Korean men and women. Metabolism. 2011 Mar;60(3):414–20.
  29. Forouhi NG, Harding AH, Allison M, Sandhu MS, Welch A, Luben R, Bingham S, Khaw KT, Wareham NJ. Elevated serum ferritin levels predict new-onset type 2 diabetes: results from the EPIC-Norfolk prospective study. Diabetologia. 2007 May;50(5):949–56.
  30. Rajpathak SN, Wylie-Rosett J, Gunter MJ, Negassa A, Kabat GC, Rohan TE, Crandall J, Diabetes Prevention Program (DPP) Research Group. Biomarkers of body iron stores and risk of developing type 2 diabetes. Diabetes Obes Metab. 2009 May;11(5):472–9.
  31. Lopez-Ridaura R, Willett WC, Rimm EB, Liu S, Stampfer MJ, Manson JE, Hu FB. Magnesium intake and risk of type 2 diabetes in men and women. Diabetes Care. 2004 Jan;27(1):134–40.
  32. Magnesium: Reversing Disease: MD Jd Levy: 9780998312408: Amazon.com: Books [Internet]. [cited 2019 Dec 10]. Available from: https://www.amazon.com/Magnesium-Reversing-MD-Jd-Levy/dp/0998312401/ref=sr_1_1?crid=DBLHI5CRJUAA&keywords=magnesium+levy&qid=1575986348&sprefix=magnesi%2Caps%2C215&sr=8-1
  33. Swaminathan R. Magnesium metabolism and its disorders. Clin Biochem Rev. 2003 May;24(2):47–66.
  34. Kostov K. Effects of Magnesium Deficiency on Mechanisms of Insulin Resistance in Type 2 Diabetes: Focusing on the Processes of Insulin Secretion and Signaling. Int J Mol Sci. 2019 Mar 18;20(6).
  35. de Valk HW. Magnesium in diabetes mellitus. Neth J Med. 1999 Apr;54(4):139–46.
  36. Afridi HI, Kazi TG, Kazi N, Jamali MK, Arain MB, Jalbani N, Sarfaraz RA, Shah A, Kandhro GA, Shah AQ, Baig JA. Potassium, calcium, magnesium, and sodium levels in biological samples of hypertensive and nonhypertensive diabetes mellitus patients. Biol Trace Elem Res. 2008 Sep;124(3):206–24.
  37. Mooren FC, Krüger K, Völker K, Golf SW, Wadepuhl M, Kraus A. Oral magnesium supplementation reduces insulin resistance in non-diabetic subjects – a double-blind, placebo-controlled, randomized trial. Diabetes Obes Metab. 2011 Mar;13(3):281–4.
  38. Zghoul N, Alam-Eldin N, Mak IT, Silver B, Weglicki WB. Hypomagnesemia in diabetes patients: comparison of serum and intracellular measurement of responses to magnesium supplementation and its role in inflammation. Diabetes Metab Syndr Obes Targets Ther. 2018;11:389–400.
  39. Schutten JC, Gomes-Neto AW, Navis G, Gansevoort RT, Dullaart RPF, Kootstra-Ros JE, Danel RM, Goorman F, Gans ROB, de Borst MH, Jeyarajah EJ, Shalaurova I, Otvos JD, Connelly MA, Bakker SJL. Lower Plasma Magnesium, Measured by Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy, is Associated with Increased Risk of Developing Type 2 Diabetes Mellitus in Women: Results from a Dutch Prospective Cohort Study. J Clin Med. 2019 01;8(2).
  40. Zhang X, Xia J, Del Gobbo LC, Hruby A, Dai Q, Song Y. Serum magnesium concentrations and all-cause, cardiovascular, and cancer mortality among U.S. adults: Results from the NHANES I Epidemiologic Follow-up Study. Clin Nutr Edinb Scotl. 2018;37(5):1541–9.
  41. Paolisso G, Barbagallo M. Hypertension, diabetes mellitus, and insulin resistance: the role of intracellular magnesium. Am J Hypertens. 1997 Mar;10(3):346–55.
  42. Moctezuma-Velázquez C, Gómez-Sámano MÁ, Cajas-Sánchez MB, Reyes-Molina DL, Galindo-Guzmán M, Meza-Arana C-E, Cuevas-Ramos D, Gómez-Pérez FJ, Gulias-Herrero A. High Dietary Magnesium Intake is Significantly and Independently Associated with Higher Insulin Sensitivity in a Mexican-Mestizo Population: A Brief Cross-Sectional Report. Rev Investig Clin Organo Hosp Enfermedades Nutr. 2017 Feb;69(1):40–6.
  43. Shahbah D, Hassan T, Morsy S, Saadany HE, Fathy M, Al-Ghobashy A, Elsamad N, Emam A, Elhewala A, Ibrahim B, Gebaly SE, Sayed HE, Ahmed H. Oral magnesium supplementation improves glycemic control and lipid profile in children with type 1 diabetes and hypomagnesaemia. Medicine (Baltimore). 2017 Mar;96(11):e6352.
  44. Verma H, Garg R. Effect of magnesium supplementation on type 2 diabetes associated cardiovascular risk factors: a systematic review and meta-analysis. J Hum Nutr Diet Off J Br Diet Assoc. 2017;30(5):621–33.
  45. Konishi K, Wada K, Tamura T, Tsuji M, Kawachi T, Nagata C. Dietary magnesium intake and the risk of diabetes in the Japanese community: results from the Takayama study. Eur J Nutr. 2017 Mar;56(2):767–74.
  46. Hruby A, Guasch-Ferré M, Bhupathiraju SN, Manson JE, Willett WC, McKeown NM, Hu FB. Magnesium Intake, Quality of Carbohydrates, and Risk of Type 2 Diabetes: Results From Three U.S. Cohorts. Diabetes Care. 2017;40(12):1695–702.
  47. Gant CM, Soedamah-Muthu SS, Binnenmars SH, Bakker SJL, Navis G, Laverman GD. Higher Dietary Magnesium Intake and Higher Magnesium Status Are Associated with Lower Prevalence of Coronary Heart Disease in Patients with Type 2 Diabetes. Nutrients. 2018 Mar 5;10(3).
  48. Richter EA, Hargreaves M. Exercise, GLUT4, and skeletal muscle glucose uptake. Physiol Rev. 2013 Jul;93(3):993–1017.
  49. ELDerawi WA, Naser IA, Taleb MH, Abutair AS. The Effects of Oral Magnesium Supplementation on Glycemic Response among Type 2 Diabetes Patients. Nutrients. 2018 Dec 26;11(1).
  50. Morakinyo AO, Samuel TA, Adekunbi DA. Magnesium upregulates insulin receptor and glucose transporter-4 in streptozotocin-nicotinamide-induced type-2 diabetic rats. Endocr Regul. 2018 Jan 1;52(1):6–16.
  51. Takaya J, Higashino H, Kobayashi Y. Intracellular magnesium and insulin resistance. Magnes Res. 2004 Jun;17(2):126–36.
  52. Guerrero-Romero F, Rodríguez-Morán M. Magnesium improves the beta-cell function to compensate variation of insulin sensitivity: double-blind, randomized clinical trial. Eur J Clin Invest. 2011 Apr;41(4):405–10.
  53. Rodríguez-Morán M, Guerrero-Romero F. Insulin secretion is decreased in non-diabetic individuals with hypomagnesaemia. Diabetes Metab Res Rev. 2011 Sep;27(6):590–6.
  54. Gommers LMM, Hoenderop JGJ, Bindels RJM, de Baaij JHF. Hypomagnesemia in Type 2 Diabetes: A Vicious Circle? Diabetes. 2016 Jan;65(1):3–13.
  55. Bardicef M, Bardicef O, Sorokin Y, Altura BM, Altura BT, Cotton DB, Resnick LM. Extracellular and intracellular magnesium depletion in pregnancy and gestational diabetes. Am J Obstet Gynecol. 1995 Mar;172(3):1009–13.
  56. Maktabi M, Jamilian M, Amirani E, Chamani M, Asemi Z. The effects of magnesium and vitamin E co-supplementation on parameters of glucose homeostasis and lipid profiles in patients with gestational diabetes. Lipids Health Dis. 2018 Jul 20;17(1):163.
  57. Orbea A, Ortiz-Zarragoitia M, Solé M, Porte C, Cajaraville MP. Antioxidant enzymes and peroxisome proliferation in relation to contaminant body burdens of PAHs and PCBs in bivalve molluscs, crabs and fish from the Urdaibai and Plentzia estuaries (Bay of Biscay). Aquat Toxicol Amst Neth. 2002 Jul;58(1–2):75–98.
  58. Serdar MA, Bakir F, Haşimi A, Celik T, Akin O, Kenar L, Aykut O, Yildirimkaya M. Trace and toxic element patterns in nonsmoker patients with noninsulin-dependent diabetes mellitus, impaired glucose tolerance, and fasting glucose. Int J Diabetes Dev Ctries. 2009 Jan;29(1):35–40.
  59. Rico H, Gómez-Raso N, Revilla M, Hernández ER, Seco C, Páez E, Crespo E. Effects on bone loss of manganese alone or with copper supplement in ovariectomized rats. A morphometric and densitomeric study. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2000 May;90(1):97–101.
  60. Forte G, Bocca B, Peruzzu A, Tolu F, Asara Y, Farace C, Oggiano R, Madeddu R. Blood metals concentration in type 1 and type 2 diabetics. Biol Trace Elem Res. 2013 Dec;156(1–3):79–90.
  61. Olivares M, Araya M, Uauy R. Copper homeostasis in infant nutrition: deficit and excess. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2000 Aug;31(2):102–11.
  62. [PDF] Reduction in Cholesterol and Triglyceride Serum Levels Following Low-Level Laser Irradiation: A Noncontrolled, Nonrandomized Pilot Study | Semantic Scholar [Internet]. [cited 2019 Dec 10]. Available from: https://www.semanticscholar.org/paper/Reduction-in-Cholesterol-and-Triglyceride-Serum-A-Jackson-Roche/dcfcfa5862c859099bccea4968d4e482274d77de
  63. Kako K, Takehara A, Arai H, Onodera T, Takahashi Y, Hanagata H, Ogra Y, Takagi H, Kodama H, Suzuki KT, Munekata E, Fukamizu A. A selective requirement for copper-dependent activation of cytochrome c oxidase by Cox17p. Biochem Biophys Res Commun. 2004 Nov 26;324(4):1379–85.
  64. Lin C-C, Huang J-F, Tsai L-Y, Huang Y-L. Selenium, iron, copper, and zinc levels and copper-to-zinc ratios in serum of patients at different stages of viral hepatic diseases. Biol Trace Elem Res. 2006 Jan;109(1):15–24.
  65. Quilliot D, Dousset B, Guerci B, Dubois F, Drouin P, Ziegler O. Evidence that diabetes mellitus favors impaired metabolism of zinc, copper, and selenium in chronic pancreatitis. Pancreas. 2001 Apr;22(3):299–306.
  66. Klevay LM. Cardiovascular disease from copper deficiency–a history. J Nutr. 2000;130(2S Suppl):489S-492S.
  67. Chwiej J, Winiarski W, Ciarach M, Janeczko K, Lankosz M, Rickers K, Setkowicz Z. The role of trace elements in the pathogenesis and progress of pilocarpine-induced epileptic seizures. J Biol Inorg Chem JBIC Publ Soc Biol Inorg Chem. 2008 Nov;13(8):1267–74.
  68. Eaton JW, Qian M. Interactions of copper with glycated proteins: possible involvement in the etiology of diabetic neuropathy. Mol Cell Biochem. 2002 Jun;234–235(1–2):135–42.
  69. John E, Laskow TC, Buchser WJ, Pitt BR, Basse PH, Butterfield LH, Kalinski P, Lotze MT. Zinc in innate and adaptive tumor immunity. J Transl Med. 2010 Nov 18;8:118.
  70. Zheng H, Blat D, Fridkin M. Novel neuroprotective neurotrophic NAP analogs targeting metal toxicity and oxidative stress: potential candidates for the control of neurodegenerative diseases. J Neural Transm Suppl. 2006;(71):163–72.
  71. Karamouzis MV, Gorgoulis VG, Papavassiliou AG. Transcription factors and neoplasia: vistas in novel drug design. Clin Cancer Res Off J Am Assoc Cancer Res. 2002 May;8(5):949–61.
  72. Jansen J, Karges W, Rink L. Zinc and diabetes–clinical links and molecular mechanisms. J Nutr Biochem. 2009 Jun;20(6):399–417.
  73. Dröge W. Free radicals in the physiological control of cell function. Physiol Rev. 2002 Jan;82(1):47–95.
  74. Wapnir RA. Zinc deficiency, malnutrition and the gastrointestinal tract. J Nutr. 2000;130(5S Suppl):1388S-92S.
  75. Tudan C, Weber FX, Levine KE. The status of trace elements analysis in biological systems. Bioanalysis. 2011 Aug;3(15):1695–7.
  76. O’Connell BS. Select Vitamins and Minerals in the Management of Diabetes. Diabetes Spectr. 2001 Aug 1;14(3):133–48.
  77. Qiao W, Peng Z, Wang Z, Wei J, Zhou A. Chromium improves glucose uptake and metabolism through upregulating the mRNA levels of IR, GLUT4, GS, and UCP3 in skeletal muscle cells. Biol Trace Elem Res. 2009 Nov;131(2):133–42.
  78. Wiernsperger N, Rapin J. Trace elements in glucometabolic disorders: an update. Diabetol Metab Syndr. 2010 Dec 19;2(1):70.
  79. Lai M-H, Chen Y-Y, Cheng H-H. Chromium yeast supplementation improves fasting plasma glucose and LDL-cholesterol in streptozotocin-induced diabetic rats. Int J Vitam Nutr Res Int Z Vitam- Ernahrungsforschung J Int Vitaminol Nutr. 2006 Nov;76(6):391–7.
  80. Chen YW, Yang CY, Huang CF, Hung DZ, Leung YM, Liu SH. Heavy metals, islet function and diabetes development. Islets. 2009 Dec;1(3):169–76.
  81. Valko M, Morris H, Cronin MTD. Metals, toxicity and oxidative stress. Curr Med Chem. 2005;12(10):1161–208.
  82. Chiu A, Katz AJ, Beaubier J, Chiu N, Shi X. Genetic and cellular mechanisms in chromium and nickel carcinogenesis considering epidemiologic findings. Mol Cell Biochem. 2004 Jan;255(1–2):181–94.
  83. Yabe J, Nakayama SMM, Ikenaka Y, Muzandu K, Ishizuka M, Umemura T. Uptake of lead, cadmium, and other metals in the liver and kidneys of cattle near a lead-zinc mine in Kabwe, Zambia. Environ Toxicol Chem. 2011 Aug;30(8):1892–7.
  84. Afridi HI, Kazi TG, Kazi N, Jamali MK, Arain MB, Jalbani N, Baig JA, Sarfraz RA. Evaluation of status of toxic metals in biological samples of diabetes mellitus patients. Diabetes Res Clin Pract. 2008 May;80(2):280–8.
  85. Martinez-Finley EJ, Chakraborty S, Fretham SJB, Aschner M. Cellular transport and homeostasis of essential and nonessential metals. Met Integr Biometal Sci. 2012 Jul;4(7):593–605.
  86. Environmental Exposure to Lead and Progression of Chronic Renal Diseases: A Four-Year Prospective Longitudinal Study | American Society of Nephrology [Internet]. [cited 2019 Dec 10]. Available from: https://jasn.asnjournals.org/content/15/4/1016
  87. Kazi TG, Jalbani N, Kazi N, Arain MB, Jamali MK, Afridi HI, Kandhro GA, Sarfraz RA, Shah AQ, Ansari R. Estimation of toxic metals in scalp hair samples of chronic kidney patients. Biol Trace Elem Res. 2009 Jan;127(1):16–27.
  88. Beyersmann D, Hartwig A. Carcinogenic metal compounds: recent insight into molecular and cellular mechanisms. Arch Toxicol. 2008 Aug;82(8):493–512.
  89. Aoshima K. Itai-itai disease: Lessons from the investigations of environmental epidemiology conducted in the 1970’s, with special reference to the studies of the Toyama Institute of Health. Nihon Eiseigaku Zasshi Jpn J Hyg. 2017;72(3):149–58.
  90. Arsenic [Internet]. [cited 2019 Oct 24]. Available from: https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/arsenic
  91. Pershagen G. The carcinogenicity of arsenic. Environ Health Perspect. 1981 Aug;40:93–100.
  92. Arsenic Exposure and the Induction of Human Cancers [Internet]. [cited 2019 Dec 10]. Available from: https://www.hindawi.com/journals/jt/2011/431287/
  93. Sohn E. Contamination: The toxic side of rice. Nature. 2014 Oct;514(7524):S62–3.
  94. Carmean CM, Seino S. Braving the Element: Pancreatic β-Cell Dysfunction and Adaptation in Response to Arsenic Exposure. Front Endocrinol. 2019;10:344.
  95. Fan Y, Zhu T, Li M, He J, Huang R. Heavy Metal Contamination in Soil and Brown Rice and Human Health Risk Assessment near Three Mining Areas in Central China. J Healthc Eng. 2017;2017:4124302.
  96. Pizzorno J. Is the Diabetes Epidemic Primarily Due to Toxins? Integr Med Clin J. 2016 Aug;15(4):8–17.
  97. Das KK, Das SN, Dhundasi SA. Nickel, its adverse health effects & oxidative stress. Indian J Med Res. 2008 Oct;128(4):412–25.
  98. Kubrak OI, Husak VV, Rovenko BM, Poigner H, Mazepa MA, Kriews M, Abele D, Lushchak VI. Tissue specificity in nickel uptake and induction of oxidative stress in kidney and spleen of goldfish Carassius auratus, exposed to waterborne nickel. Aquat Toxicol Amst Neth. 2012 Aug 15;118–119:88–96.

 

 

 

 

 

糖尿病等慢性疾病的综合管理-环境污染与2型糖尿病关系篇

糖尿病等慢性疾病的综合管理

必需金属及有毒金属与2型糖尿病关系篇

成 长

前言

2型糖尿病(T2DM)影响着全世界数亿人。据世界卫生组织2016年估计,中国约10%的人口,即超过一亿人(~1.1亿)是2型糖尿病病人[1]。据美国疾控中心(CDC)2017年报告,美国的糖尿病发病率与中国相近,也在~10%,~3千万糖尿病病人;糖尿病前期病人~占总人口25%,~8千4百万。美国目前有超过一亿人是糖尿病糖或尿病前期病人。到2050年,糖尿病总人口将翻3倍,占美国总人口的1/3。如果不加干预,糖尿病前期病人一般5年内发展为临床糖尿病[2]。

糖尿病是一主要流行病,给全人类带来巨大健康,经济负担。糖尿病的综合管理已经刻不容缓。糖尿病的综合管理必须是一个政府,企业,民间,以及医药界与消费者的共同合作,团结共赢的合作。否则,糖尿病将会给个人,家庭,社会,及政府带來沉重的,不可持续的健康,经济负担。

低碳/生酮饮食用于糖尿病管理在过去几年中在世界范围内,在大众及部分医务人员中引起了越来越广泛的关注。关于低碳/生酮饮食用于糖尿病治疗的临床研究越来越多,是治疗糖尿病的第一步,也是非常重要的一步。低碳/生酮饮食者用于糖尿病的治疗肯定无疑地是一个里程碑式的进展,但认为低碳/生酮饮食是“一刀切”的能解决糖尿病全部问题的灵丹妙药,可能会产生失望及误导。与大部分慢性疾病一样,糖尿病也是一个多因素疾病,是各种外源性糖尿病致病剂(diabetogen),如饮食中糖过多,金属,非金属毒素过量等,加上内源性因素,如睡眠运动营养等不足,导致人体一系列的代谢紊乱,最后致病。糖尿病不是一个单因素疾病,管理手段也不应该是单一的。本文将试图以多篇文章的形式,系统综合分析各种因素,最后并提出一个综合性的预防,治疗,管理方案。

环境污染(金属及非金属化学品)与2型糖尿病关系

天然存在的金属无机元素,在生命组织中的含量很少,但对生命的重要过程至关重要[3]。一些金属(例如镁)被称为常量金属(相对于稀有元素),在人体组织中含量很高,因此它们也被称为常量营养素(macro nutrients)[4]。常量营养素是指日常饮食中每种至少需要100 mg的营养素[5]。相反,某些金属例如体内所需的铜(Cu),锌(Zn),铁(Fe)和锰(Mn),铬(Cr)等非常少量,少于百万分之100(ppm),因此称为微量元素或微量营养素[6]。镁,锌,铬,铁,錳,铜等各种金属被认为对正常人体健康至关重要[3,7]。金属参与各种生理过程,例如许多蛋白质的修复基团,水平衡,多种酶的辅因子等[8]。几种金属作为金属蛋白酶/金属酶作为蛋白质/酶的一部分[9]。这类不含金属的修复基团的蛋白质无法执行其生理功能[10]。调节身体中各种金属含量是其正常功能的前提[11]。金属使肌肉收缩或放松,并通过神经传递冲动。大多数金属以可溶性盐形式存在,可调节生物流体的组成。微量元素的适当代谢功能取决于它们在各种身体组织中的正常水平[12]。

但是工农业革命及快速经济发展,尤其是过去三四十年的中国,也带来了环境污染,包括各种有毒金属和化学物质。这些环境毒素污染了我们的食物,水,空气以及我们日常生活中接触的所有事物。它们是导致当今慢性病猖獗的重要原因。对于每个人,尤其是医疗保健专业人员,识别,测试和采取措施以预防和抵抗,驱除或减少它们的影响至关重要。

必需金属及其生理作用:

 累积的证据表明这些金属对于维持人类正常生理至关重要。这些金属的失衡与糖尿病及糖尿病并发症发生密切相关。这些金属的失衡不纠正,糖尿病及其他慢病难以得到根本上的预防,治疗。

 铁(Fe):糖尿病患者和其他慢性病患者中铁蛋白往往较高,提示铁过量。血清铁蛋白水平可能成为糖尿病的替代标志物,以预测糖尿病的发生。

铁是血红蛋白和肌红蛋白合成所必需的重要金属。铁与锌,維生素C一样,也是弹性蛋白和胶原蛋白的合成中所必須的[13]。在血液中,一小部分血清铁被糖蛋白(称为转铁蛋白)转运到细胞中[14]。铁蛋白是人体组织内储存游离铁的方式。铁蛋白在新诊断的糖尿病患者中铁的含量增加[15,16]。与非糖尿病患者相比,糖尿病患者的铁蛋白水平更高。最近,有报告显示血清铁蛋白越高,组织中的铁沉积越多,随糖尿病持续时间呈线性增加[17]。血清铁蛋白升高被认为是铁超负荷的指标,严重时可导致血色病[18]。多项研究表明血色病与2型糖尿病之间存在关联[19–21]。高铁水平是细胞内氧化压力升高的主要原因,会氧化各种生物分子,例如核酸,蛋白质和脂质,这可能通过减少胰腺β细胞的胰岛素分泌以及胰岛素抵抗的增加而促进T2D的发展[22–26]。研究显示血清铁蛋白水平与在糖尿病前期,胰岛素抵抗之间存在很强的关系[27,28]。除葡萄糖升高外,血清铁蛋白水平可能成为糖尿病的替代标志物,以预测疾病的发作[29,30]。

镁(Mg):糖尿病,妊娠糖尿病人镁偏低。镁在胰岛素抵抗,糖尿病发生发展,预防治疗中占有重要地位。

镁是最丰富的常量营养素(macro nutrient)之一,对于维持适当的健康至关重要。300多种酶的活性需要镁,这些酶在人体中具有多种重要的生理功能[31,32]。含镁的酶参与葡萄糖的稳态,神经传递,DNA和RNA的产生[33]。镁在调节胰岛β细胞的胰岛素分泌中起重要作用,并改善胰岛素受体的胰岛素结合[34,35]。已证明镁缺乏可能导致胰岛素介导的葡萄糖摄取减少[31,36]。另一方面,补充镁可预防胰岛素抵抗,并减少糖尿病的发展[37]。一些研究报道,相对于健康对照者,糖尿病患者血清中的镁含量较低,而尿中镁的排泄量增加[36]。研究显示口服镁补充剂可降低血糖,血压和甘油三酸酯[37]。镁缺乏是导致糖尿病发展和恶化的主要因素。低镁似乎是胰岛素抵抗的直接原因之一[38]。今年(2019)的一項荷兰的大型PREVEND研究对5747名最初无糖尿病的受试者进行了研究,隨訪了11年,血浆镁水平低与女性患糖尿病的风险更高独立相关[39]。最近的一项随访了29年涉及14353名受试者的研究显示,美国成年人的血清镁浓度极低与全因死亡率增加的风险显着相关[40]。长期较低的镁明显促进胰岛素抵抗,持续补充镁明显提高血清和细胞内镁浓度。补充镁似乎可以改善胰岛素介导的细胞葡萄糖摄取, 改善对胰岛素的抵抗力[41–44]。对13,525名日本人进行的一项为期10年的研究表明,高镁摄入量可降低糖尿病风险[45]。 在对3个队列,总计200,000多人进行了长达28年的综合分析后,研究人员表明,较高的镁摄入量可降低糖尿病的患病风险,尤其是与低碳饮食結合时[46]。在糖尿病患者中,高镁摄入和高血清镁可降低冠心病的风险[47]。  在动物研究中,镁似乎不仅会降低胰岛素抵抗,还会增加胰岛素受体和葡萄糖转运蛋白,这些都是糖尿病的标志[48–50]。在许多糖尿病患者中,存在低镁导致胰岛素抵抗和胰岛素抵抗导致镁缺乏的恶性循环[34,51]。一项双盲随机试验显示,在非糖尿病人群中,镁被证明能够根据需要改善β细胞分泌胰岛素的能力[52]。低镁水平可抑制非糖尿病患者的胰岛素分泌[53]。镁水平低的糖尿病患者往往发展更快,并发症更多[54]。

与正常孕妇或非孕妇相比,妊娠糖尿病妇女还显示出低镁[55]。镁和维生素E的补充可显着改善妊娠糖尿病妇女的血糖控制和血脂水平[56]。

锰(Mn

锰在多种酶(包括与骨髓产生有关的酶以及碳水化合物,蛋白质和脂肪的代谢)中充当辅助因子[57]。这对于正确利用胆碱,硫胺素,生物素,维生素C和维生素E是必不可少的。锰作为酶的辅助因子也参与线粒体糖蛋白的合成[58]。由于缺乏锰,这些酶的活性受损,导致软骨生成异常[59]。锰也是丙酮酸羧化酶的辅因子,其在通过糖异生作用将各种非碳水化合物转化成葡萄糖用于随后的使用中起作用。简而言之,锰也是正常胰岛素合成,其分泌以及代谢改变涉及糖尿病发展所必需的[3]。Forte等一项研究发现2型糖尿病患者锰缺乏[60]。

铜(Cu

铜是另一种必需的矿物质,它具有多种生物学功能。超氧化物歧化酶(SOD)的催化活性是必需的,它参与保护细胞免受超氧化物自由基的侵害[61]。铜的不平衡与正常的高密度脂蛋白(HDL)和低密度脂蛋白(LDL)平衡的破坏有关[62]。铜还激活线粒体电子传输链中涉及的细胞色素氧化酶[63]。在缺铜的情况下,细胞色素氧化酶会降低其活性,这可能导致代谢活性组织(如胰腺腺泡细胞,肝细胞等)中的线粒体变形[64,65]。已有的研究表明,铜缺乏是导致心血管疾病发展的原因之一[66]。其他报道表明,铜还有助于预防关节炎相关的炎症和癫痫病[67]。铜水平的紊乱与糖尿病的代谢途径及其并发症相关的异常有关[3,68]。铜以及锌金属起着保护人体组织氧化损伤的作用[69,70]。

锌(Zn

锌是一种必需的微量元素,参与多种生化途径,例如转录,翻译,细胞分裂和凋亡[71]。 300多种酶需要锌才能发挥催化活性。从催化位点除去锌会导致各种酶的活性丧失[72]。约70%的锌与白蛋白结合,白蛋白的任何病理改变都会影响血清中的锌水平[73]。锌吸收不良会导致各种类型的疾病,包括皮肤,胃肠道,神经和免疫异常[74]。

铬(Cr

铬的生物活性取决于其价态及其形成的化学络合物[12,75]。铬的三价形式具有很高的生物活性,是细胞最佳摄取葡萄糖所必需的[75,76]。铬通过上调肌肉细胞中的葡萄糖转运蛋白(GLUT4)的转运来刺激胰岛素信号传导途径和代谢,从而调节胰岛素和血糖水平[77]。铬缺乏症会导致血糖水平升高,如果长期坚持下去,可能导致糖尿病的发展[78]。一些报告表明,铬补充剂可降低糖尿病患者的血糖水平[79]。长时间的高血糖会增加铬的尿排泄[3,60]。

有毒金属与健康,慢病尤其是糖尿病的关系:

 砷,锌,镉,汞和镍等超标时,都是强力的氧化剂,可以促进糖尿病等慢性病甚至癌症的发生[80]

有毒金属铅(Pb),镍(Ni),镉(Cd)和砷(As)等进入体内后,沉积在组织中并且不可降解。因此,这些金属通常长时间保留在组织中,带来的问题通常难以消除。人体组织可以忍受一定水平的金属。超过此阈值限制,组织会由于金属毒性而受到损坏。一些有毒金属,包括镍,砷等被证明是致癌物[81–83]。

铅(Pb

据报道,糖尿病人的生物样品(即血浆和尿液)中的某些有毒金属(包括铅)的浓度高于非糖尿病人[84]。铅对人体大多数器官有害,并干扰新陈代谢和细胞功能[85]。研究显示,与年龄有关的疾病中血铅水平与肾功能不全之间存在线性关系。这可能是由于经常暴露于环境铅有关[86]。研究表明,接触铅会严重影响抗氧化途径[83]。现有证据表明,金属诱导的毒性可能导致活体组织中抗氧化机制的紊乱。结果产生了活性氧(ROS)。这种抗氧化剂的不平衡可能导致蛋白质,核酸和脂质过氧化降解。 ROS对细胞成分的氧化攻击与包括糖尿病在内的几种人类疾病的发病机制有关[87,88]。事实上绝大部分(如果不是所有)慢性病都与氧化压力升高相关。

镉(Cd

镉是一种重金属,广泛存在于空气,水和土壤等环境中。水中镉的增加被植物,动物和人类吸收[84]。经常接触镉会导致其在肾脏中的过量积累,从而导致肾脏损害和肾病[87]。此外,高含量的镉会降低钙的吸收,严重则可导致骨骼和肾脏损伤,是“痛痛病“(Itai-Itai Disease)。广泛镉中毒引起的“痛痛病”最先在日本发现[89]。也有报道称镉可能通过胰岛素下调葡萄糖转运蛋白4(GLUT4)的转运并增强诱导胰腺β细胞在糖尿病中的破坏[80]。

砷(As,砒霜):

砷是一种天然存在的致命类金属,主要用于铜合金和铅蓄电池。也常见于杀虫剂,除草剂和农药的生产中。砷是WHO列为第一类的致癌剂[80,90–92]。砷对地下水的污染正在严重威胁着全世界的人类生命[81,84,93]。砷被广泛认为是致癌物和强氧化剂,会损害神经元,肝,心血管,皮下和肾器官系统。慢性砒霜超标与糖尿病一样是全球最普遍的一大流行病(epidemic)[94]。

经常接触砷与多种疾病(包括某些类型的癌症和糖尿病)有关。研究表明,由于细细胞信号转导的改变,葡萄糖代谢被破坏,随后GLUT4易位至膜可能会被逮捕。一些研究表明砷与β细胞功能障碍有关[14,75]。

砷主要存在于地下矿物化合物中。在喜马拉雅山的岩石中尤为常见。在拥有1.67亿人口的孟加拉国,超过1亿的人患有急性砷中毒,占该东南亚国家每3个人中的2个人!由于采矿和燃煤,砷被释放到我们赖以生存的大气及地表水中,污染我们的生活环境中。大米中会积累砷,铅,汞和镉。但是砷在大米中尤其成问题,因为砷在全世界的水和土壤中都有存在,并且大米在水中的生长时间很长。大米含有维生素,矿物质和碳水化合物,但大米也有令人讨厌的地方:金属特别是无机砷(砒霜)的污染。稻米是人类饮食中无机砷污染的主要来源[93]。因此,与其他农作物相比,水稻吸收的砷是其他农作物的10-20倍。稻壳中的砷含量最高,因此糙米中的砷含量较高[93]。在过去的几十年中,中国经济的快速发展也付出了巨大的代价:环境污染,尤其是镉,砷,铅,锑[95]。

中国人中65%以大米为主食。中国人砷过量的原因中,60%被认为与大米的砷污染有关[93]。全世界一半的人口每天都吃米饭。

全美国3亿人中有约4%的人的公共饮用水中砷含量超过美国环保署(EPA)的标准(10ug/L)[96]。实际数据可能远超4%,因为有很多美国的饮水源(接近一半)没测试过的。全球而言,估计影响到4亿人口的浅层地下水有较高的无机砷[94]。海鲜,大米,蘑菇,禽类是食物中砷的主要来源。

镍(Ni

镍是铁磁性元素,主要用于Ni-Cd电池中。大多数人口通过不同的方式暴露于镍,例如饮用污水,空气和食用受镍污染的食物[97]。已经观察到肾脏是镍积累的主要器官,因此是肾功能不全的原因[98]。Forte等人发现2型糖尿病患者血液中的镍含量较正常对照组明显升高[60]。

简而言之,研究人员分析了各种生物流体,例如血清/血浆,头发,尿液等,以便了解包括糖尿病在内的各种疾病中金属代谢的改变。在这些生物样品中,尿液是唯一的,因为它易于获取且无创采样。在一些以前发表的研究中,研究人员显示了尿液中的金属含量与他们的血清中金属含量相对应[1,14]。前述研究表明,有毒金属和必需微量金属之间存在联系[78]。

文献

 

 

实证科学忽视总体、整体,重视细枝末节。

今天读到一好文: 史前文明被发现,进化论即将被推翻,人类未来该往哪走?

以前此类文章也读过一些,但今天读来,颇有感触。作者写道: “实证科学忽视总体、整体,重视细枝末节。它的指导思想认为「把握整体的关键是分化」,要研究一个事物,就把它细分、再细分,研究清楚每一个细节,再还原到整体,称为还原论。而实际上,由于领域、学科分得太细、太专,根本就无法还原到整体,甚至各学科之间都不能完全了解,还原论成了泡影。实际上实证科学发展的结果,已经无法把握整体,那么不得不承认的现实就是:实证科学无法全面认识事物。这条发展科学的路线的局限性一目了然。”

我只是一名医生,也了解一些生物学。但对广泛的科学并不了解。据此文章,似乎这种“忽视总体,整体,重视细枝未节”,我称之为“拣芝麻,丢西瓜”的思维方式,不仅仅存在于医学,而且是现代“科学”的通病。

我从医40多年,涉及生物化学,分子生物学,内科学,肿瘤学,病理学等领域。从基础实验室,到临床内科,急症医学,生物制药公司,可以说涉及很广,但学不精专,啥都没学好。这几十年来,我总觉得读了不少书,也通过了数不清的高难度考试,但从未找到真正让我想信,让我激动,入迷的一门学科,直到我发现:整体医学(Integrative Medicine)。

我如饥似渴地学习,想弄清医学到底是咋回事。把我40多年各方面的所学融汇贯通,逐渐开始明白,原来,以前都是“忽视总体,整体,重视细枝未节”,只见树木 不见林的思维。如果我们“退一步”,“海宽地空”地对人体,环境及健康,疾病宏观地思考,那么我们就可以了解并改善/治愈很多疾病了。

但我这类“整体医学”信奉者还是极少数,但此“史前文明”一文似乎表明科学界应该有其他同道。如果这些同道聚在一起,尽管学科不同,但思维,哲理相妨,那又会是怎样的一个场景呢?

成博士(部分)近年获邀演讲

  • 2019.8.25:专题演讲:“维生素C:万应灵丹”。功能食品研发,应用与安全国际论坛。四川大学主办。成都,四川。 
  • 2019.8.24:专题演讲:“低碳/生酮饮食中被忽视的重要性:从自身免疫病的治疗谈农药残留污染”。中华医学会肠外肠内营养2019年年会。北京。 
  • 2019.8.17:主题报告:“动脉粥样硬化是一可逆的营养性疾病维生素CK2及镁,脯/赖氨酸等在冠心病预防及治疗中的作用”。中国医师协会营养医学年会。沈阳,中国。 
  • 2019.8.18:专题演讲:“癌症是一由线粒体产能障碍引起的代谢性疾病”。中国医师协会营养医学年会。沈阳,中国。 
  • 2019.7.2: 专题演讲:“镁,一个重要但被严重忽略的营养素”深圳宝安中心医院,深圳 
  • 2019.7.3: 专题演讲:“低碳医学用于慢病管理”深圳宝安中心医院,深圳 
  • 2019.5.23:主题演讲:A Paradigm Shift in MedicineMcNair Enterprise Institute, USC, Charleston, SC, USA. 
  • 2019.4.18:主题演讲:”镁,一个重要但被严重忽略的营养素“ 中国抗癌基金会营养分会年会。北京 
  • 2019.4.18:论坛演讲:”低碳医学用于慢病管理 中国抗癌基金会营养分会年会。北京。 
  • 2019.4.18:论坛演讲:”癌症是一代谢性疾病 中国抗癌基金会营养分会年会。北京。 
  • 2019.4.12:主题演讲:”冠心病是一可逆的营养性疾病 中国慢病暨心血管疾病管理年会,湖南长沙。 
  • 2019.4.12:论坛演讲:”以代谢论为基础的癌症综合治疗 中国慢病暨心血管疾病管理年会,湖南长沙。 
  • 2018.8.28 论坛演讲:”癌症是一代谢性疾病 中华医学会肠内肠外营养分会年会。北京。 
  • 2018.8.28 论坛演讲:”隐性杀手补钙剂“ 中华医学会肠内肠外营养分会年会。北京。 
  • 2018.9.12 专题演讲:“癌症综合治疗”北京大学深圳医院,深圳。 
  • 2018.9.3 专题演讲:“癌症综合治疗”湖北十堰太和医院,湖北十堰。 
  • 2018.1.29 专题演讲:“癌症综合治疗”肿瘤综合治疗国际论坛,上海中医药大学岳阳医院。 
  • 2018.1.30 专题演讲:“抗衰老/功能医学在癌症综合治疗中的应用”抗衰老与肿瘤代谢疗法国际论坛。上海医学会等,上海